← Terug naar Graas-Baas

Hoe werkt dit?

Wetenschappelijke onderbouwing — 43 internationale studies

Wat is fructaan en waarom is het belangrijk?

Fructaan is een suiker-polymeer dat grassen aanmaken als reservevoorraad. In gematigde klimaten (zoals Nederland en België) zijn vooral C3-grassen (Engels raaigras, kropaar, beemdlangbloem) grote fructaan-opslaande soorten. Voor paarden — vooral pony's en paarden met EMS, Cushing (PPID), insulinedysregulatie of een laminitis-historie — is een hoge fructaan-inname een directe trigger voor hoefbevangenheid (laminitis).

Het meest gebruikte praktijk-getal is WSC% (water-soluble carbohydrates: fructaan + sucrose + glucose + fructose), uitgedrukt als percentage droge stof. Deze tool schat WSC% per uur op basis van weersomstandigheden, grassoort en grashoogte.

Hoe wordt fructaan gevormd?

Wanneer fotosynthese méér suiker oplevert dan de plant in groei kan stoppen, wordt het overschot opgeslagen als fructaan. Dit gebeurt vooral wanneer:

Het dagritme

Fructaan/WSC volgt een 24-uurs cyclus: laagste rond 04:00, hoogste rond 16:00. Een verschil van factor ~1.7× tussen ochtend en middag is typisch. Belangrijke uitzondering: na een koude nacht wordt het ochtend-dal niet bereikt — fructaan blijft 's ochtends hoog. De tool herkent dit en past de berekening aan. (Longland 1999, Kagan 2018, McIntosh 2007)

Het effect van grashoogte

In Engels raaigras zit de meeste fructaan in de bladbasis en pseudostengel. Kort gemaaid gras heeft daardoor de hoogste concentratie per gram droge stof. Lang gras heeft een lagere concentratie maar paarden eten er sneller veel van; de totale dosis per uur kan dan hoger zijn. De tool gebruikt concentratie als basis. (Pavis 2001, Morvan-Bertrand 1999, Longland & Harris 2011)

Het effect van grassoort

TypeMultiplierToelichting
Engels raaigras1,00Referentie — de meeste cultuurweides
Gemengd0,80Mix raaigras + andere soorten
Kruidenrijk0,60Klaver, kruiden, natuurgrasland

(Smouter & Simpson 1989, Pavis 2001, Kagan 2020)

Risico-classificatie

De tool gaat uit van een paard met een verhoogd risico (oudere pony, overgewicht, of geen ID-test). Voor een EMS/PPID-paard zijn de drempels strenger; voor een gezond paard ruimer.

NiveauWSC %Betekenis
Veilig< 8 %Geen verhoogd risico
Let op8 – 12 %Beperk graastijd, kies vroege ochtend
Risico12 – 18 %Risicopaarden niet laten grazen
Vermijd> 18 %Alle gevoelige paarden van de wei

(Durham et al. 2019 — ECEIM consensus, Watts 2004, Geor 2009)

De formule

WSC%(uur) = WSC_basis(maand)
          × diurnaal_multiplier(uur)
          × grassoort_multiplier
          × grashoogte_multiplier
          × groeistadium_multiplier
          × bemesting_multiplier
          × neerslag_multiplier
          + stress_accumulatie(verleden 48 u)

Neerslag-multiplier (juli 2026)

Regen beïnvloedt WSC in beide richtingen, afhankelijk van context. Droogte laat fructaan opstapelen; regen + warmte stimuleert groei waardoor suiker wordt verbruikt. Gebaseerd op Volaire & Lelièvre (1997), Lattanzi et al. (2012) en irrigation-reviews.

Regen laatste 7 dagen (bij T ≥ 5 °C)Multiplier
< 10 mm — droogte (KNMI-drempel)× 1.15
10 – 15 mm — mild droog× 1.08
15 – 30 mm — neutraal× 1.00
30 – 60 mm — vochtig, actieve groei× 0.92
> 60 mm — zeer vochtig, sterk suikerverbruik× 0.88

Groei-burst-bonus: als regen laatste 3 dagen > 15 mm én gemiddelde T > 8 °C → extra ×0.95 (Lattanzi sink-strength).

Drought-recovery cyclus: als recente regen (>25 mm/7d) volgt op droge periode (<10 mm dag 8-14) én warm (>10 °C) → extra ×0.90 op WSC, MAAR tegelijk +15 punten op de stress-score en een lush regrowth-vlag. Reden: nieuwe blad na droogte is hoog in suiker/zetmeel — klinisch bekend piek-laminitis-moment (KER, SaferGrass, Mad Barn).

Cap: 0.80× tot 1.15× — voorkomt extreme uitschieters.

(Volaire & Lelièvre 1997; Lattanzi et al. 2012; SaferGrass, KER-artikelen; validatie in research/neerslag-model-vergelijking.md)

Beperkingen — lees dit

Gebruik dit als ondersteuning bij dagelijkse beslissingen, niet als vervanging van veterinair advies.

📖 Volledige referentielijst (43 studies)
  1. Asplin KE, Sillence MN, Pollitt CC, McGowan CM (2007). Induction of laminitis by prolonged hyperinsulinaemia in clinically normal ponies. Veterinary Journal 174:530–535. DOI
  2. Bailey SR, Menzies-Gow NJ, Harris PA et al. (2007). Effect of dietary fructans and dexamethasone administration on the insulin response of ponies predisposed to laminitis. JAVMA 231:1365–1373.
  3. Borer KE, Bailey SR, Menzies-Gow NJ, Harris PA, Elliott J (2012). Effect of feeding glucose, fructose, and inulin on blood glucose and insulin concentrations in normal ponies and those predisposed to laminitis. J Anim Sci 90:3003–3011.
  4. Burns TA, Geor RJ et al. (2010); Geor RJ (2009). Pasture-associated laminitis. Vet Clin North Am Equine Pract 25:39–50.
  5. Cairns AJ, Howarth CJ, Pollock CJ (2002). Fructan biosynthesis in transgenic plants. J Exp Bot 54:549–567.
  6. Carslake HB, Pinchbeck GL, McGowan CM (2021). Equine metabolic syndrome in UK native ponies and cobs is highly prevalent with modifiable risk factors. Equine Vet J 53:923–934.
  7. Chatterton NJ, Harrison PA, Bennett JH, Asay KH (1989). Carbohydrate partitioning in 185 accessions of Gramineae grown under warm and cool temperatures. J Plant Physiol 134:169–179.
  8. Crawford C, Sepulveda MF, Elliott J, Harris PA, Bailey SR (2007). Dietary fructan carbohydrate increases amine production in the equine large intestine. J Anim Sci 85:2949–2958.
  9. de Laat MA, McGowan CM, Sillence MN, Pollitt CC (2010). Equine laminitis: induced by 48 h hyperinsulinaemia in Standardbred horses. Equine Vet J 42:129–135.
  10. Durham AE, Frank N, McGowan CM et al. (2019). ECEIM consensus statement on equine metabolic syndrome. J Vet Intern Med 33:335–349.
  11. Fitzgerald DM, Walsh DM, Sillence MN, Pollitt CC, de Laat MA (2019). Insulin and incretin responses to grazing in insulin-dysregulated and healthy ponies. J Vet Intern Med 33:225–232.
  12. Frank N, Tadros EM (2014). Insulin dysregulation. Equine Vet J 46:103–112.
  13. Glunk EC, Pratt-Phillips SE, Siciliano PD (2013). Effect of restricted pasture access on pasture dry matter intake rate. J Equine Vet Sci 33:421–426.
  14. Glunk EC, Sheaffer CC, Hathaway MR, Martinson KL (2014). Interaction of grazing muzzle use and grass species on forage intake of horses. J Equine Vet Sci 34:930–933.
  15. Gonzalez B, Boucaud J et al. (1989). Fructan and cryoprotection in ryegrass (Lolium perenne L.). New Phytol 111:319–325.
  16. Guerrand D, Prud'homme MP, Boucaud J (1996). Fructan metabolism in expanding leaves, mature leaf sheaths and mature leaf blades of Lolium perenne. New Phytol 134:205–214.
  17. Hoffman RM, Wilson JA, Kronfeld DS et al. (2001). Hydrolyzable carbohydrates in pasture, hay, and horse feeds: direct assay and seasonal variation. J Anim Sci 79:500–506.
  18. Ince JC, Longland AC, Moore-Colyer MJS, Harris PA (2014). In vitro degradation of grass fructan by equid gastrointestinal digesta. Grass Forage Sci 69:514–523.
  19. Jensen KB, Harrison P, Chatterton NJ, Bushman BS, Creech JE (2014). Seasonal trends in nonstructural carbohydrates in cool- and warm-season grasses. Crop Sci 54:2328–2340.
  20. Kagan IA, Lawrence LM, Seman DH, Smith SR (2018). Effects of Sampling Time, Cultivar, and Methodology on Water- and Ethanol-Soluble Carbohydrate Profiles of Three Cool-Season Grasses in Central Kentucky. J Equine Vet Sci 60:62–71.
  21. Kagan IA, Anderson MJ, Kramer K, Strickland JR, Lawrence LM, Smith SR (2020). Seasonal and species variation in raffinose, short-chain fructan, and long-chain fructan accumulation in tall fescue and timothy. Grass Forage Sci 75:243–256.
  22. Lattanzi FA, Ostler U et al. (2012). Fluxes in central carbohydrate metabolism of source leaves in a fructan-storing C3 grass. J Exp Bot 63:2363–2375.
  23. Longland AC, Cairns AJ, Humphreys MO (1999). Seasonal and diurnal changes in fructan concentration in Lolium perenne: implications for the grazing management of equines pre-disposed to laminitis. Proc 16th Equine Nutr Physiol Soc Symp.
  24. Longland AC, Byrd BM (2006). Pasture nonstructural carbohydrates and equine laminitis. J Nutr 136:2099S–2102S.
  25. Longland AC, Barfoot C, Harris PA (2012). Comparison of a colorimetric and a HPLC method for the determination of fructan in pasture grasses for horses. J Sci Food Agric 92:1878–1885.
  26. Longland AC, Harris PA (2011). Effect of grass cover, sward height and grazing time on intake of pasture by ponies. Proc Brit Soc Anim Sci.
  27. McIntosh BJ (2007). Circadian and seasonal variation in pasture nonstructural carbohydrates and the physiological response of grazing horses. PhD dissertation, Virginia Tech.
  28. Menzies-Gow NJ, Harris PA, Elliott J (2017). Prospective cohort study evaluating risk factors for the development of pasture-associated laminitis in the United Kingdom. Equine Vet J 49:300–306.
  29. Morvan-Bertrand A, Boucaud J, Prud'homme MP (1999). Roles of the fructans from leaf sheaths and from the elongating leaf bases in the regrowth following defoliation of Lolium perenne L. Planta 209:475–485.
  30. Pavis N, Chatterton NJ, Harrison PA et al. (2001). Structure of fructans in roots and leaf tissues of Lolium perenne. New Phytol 150:83–95.
  31. Pollock CJ, Cairns AJ (1991). Fructan metabolism in grasses and cereals. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol 42:77–101.
  32. Smouter H, Simpson RJ (1989). Occurrence of fructans in the Gramineae (Poaceae). New Phytol 111:359–368.
  33. Treiber KH, Kronfeld DS, Hess TM et al. (2006). Evaluation of genetic and metabolic predispositions and nutritional risk factors for pasture-associated laminitis in ponies. JAVMA 228:1538–1545.
  34. Treiber KH, Kronfeld DS, Geor RJ (2006). Insulin resistance in equids: possible role in laminitis. J Nutr 136:2094S–2098S.
  35. Turner LB, Cairns AJ, Armstead IP et al. (2006). Dissecting the regulation of fructan metabolism in perennial ryegrass with quantitative trait locus mapping. New Phytol 169:45–58.
  36. Valluru R, Van den Ende W (2008). Plant fructans in stress environments: emerging concepts and future prospects. J Exp Bot 59:2905–2916.
  37. van Eps AW, Pollitt CC (2004). Equine laminitis: loss of hemidesmosomes in hoof secondary epidermal lamellae correlates to dose in an oligofructose induction model. Equine Vet J 36:255–260.
  38. van Eps AW, Pollitt CC (2006). Equine laminitis induced with oligofructose. Equine Vet J 38:203–208.
  39. Volaire F, Lelièvre F (1997). Production, persistence, and water-soluble carbohydrate accumulation in 21 contrasting populations of Dactylis glomerata L. subjected to severe drought in the south of France. Aust J Agric Res 48:933–944.
  40. Watts KA (2004). Forage and pasture management for laminitic horses. Clin Tech Equine Pract 3:88–95.
  41. Williams CA, Kenny LB, Burk AO (2019). Effects of grazing system, season, and forage carbohydrates on glucose and insulin dynamics of the grazing horse. J Anim Sci 97:2541–2554.
  42. Paardnatuurlijk.nl Fructaanindex — bestaande tool-baseline (geen peer-review).
  43. Rutgers FS1340 (2019), Oregon State Univ EM 9415 (2022), University of Minnesota Extension — extension-richtlijnen.